2025年6月5日 17:06 星期四
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工业大麻EMS突变体及大麻素合成相关基因表达分析  PDF

    刘永蓓 1
    ✉
    张小雨 2
    ✉
1. 湖南科技职业学院药学院,长沙 410004; 2. 中国农业科学院麻类研究所,长沙 410205

最近更新:2025-01-23

DOI:10.13430/j.cnki.jpgr.20240430002

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目录contents
摘要
关键词
1 材料与方法
1.1 试验材料
1.2 试验方法
1.3 数据分析
2 结果与分析
2.1 突变剂量选择
2.2 突变表型观察
2.3 突变体大麻素含量测定
2.4 突变体大麻素代谢途径关键催化酶基因克隆及测序分析
2.5 突变体大麻素代谢途径关键催化酶基因表达分析
3 讨论
参考文献

摘要

工业大麻(Cannabis sativa L.)是一种应用在造纸、医疗保健、纺织等领域的高价值经济作物。创制工业大麻新种质是开展品种选育和功能基因组研究的重要基础。本研究利用甲基磺酸乙酯(EMS)构建了中大麻资4号的突变体群体。通过设置8个EMS诱变剂浓度梯度处理,明确了0.8% EMS处理浓度对中大麻资4号诱变效果最好。对2000粒中大麻资4号种子进行诱变后,M1共成苗644株,萌发率为32.2%,其中包括叶色、花序和株高变异单株90株,突变率为13.98%。对M1突变体进行大麻二酚含量测定,获得3个高大麻二酚和2个低大麻二酚含量突变株;通过测序发现大麻二酚含量突变体中5个大麻素关键催化酶基因(CsPT4、CsOAC1、CsOLS1、CsCBDAS和CsTHCA)及其启动子区域DNA序列均未发生突变,但是大麻二酚含量突变体中以上5个催化酶基因的表达水平较对照出现显著变化。由此推断,EMS处理导致了突变体中影响大麻二酚代谢途径的调控基因突变进而调控大麻二酚合成途径催化酶的表达,最终表现为突变体花头中大麻二酚含量显著变化。本研究通过创制EMS突变体群体为工业大麻育种提供了优异种质资源,也为进一步解析大麻素合成代谢途径的调控机制及挖掘相关基因提供良好材料和基础。

关键词

工业大麻; EMS突变体; 大麻素; 基因表达

大麻(Cannabis sativa L.)又称火麻,是我国传统的纤维植物和药用植物,属于大麻科(Cannabinaceae) 大麻属(Cannabis)一年生草本植物[

参考文献 1
百度学术    
1]。大麻茎秆纤维耐拉能力强且抑菌透气,可用于服装纺织面料;其腺毛是合成和储存大麻素和萜类化合物的主要部位,主要集中于花叶和雌花的苞片表面[
参考文献 2-3
2-3]。工业大麻是指四氢大麻酚(THC, tetrahydrocannabinol)小于0.3%的大麻品种 [
参考文献 4-5
4-5]。近些年临床研究发现,工业大麻含有的大麻素成分大麻二酚(CBD, cannabinoid)在抗抑郁、抗炎和缓解疼痛等方面具有重要的药用价值和临床应用前景[
参考文献 6-8
6-8],且人体对大麻二酚不产生成瘾性[
参考文献 9-11
9-11]。大麻素的生物合成途径涉及多条代谢通路。基因CsOLS1和CsOAC1分别编码其中的关键催化酶橄榄酸醇合酶(OLS, olivetol synthase)和橄榄酸环化酶(OAC, olivetolic acid cyclase),催化合成橄榄酸(OLA,olivetolic acid)和焦磷酸香叶酯(GPP, geranyl pyrophosphate)等前体物质。CsPT4编码异戊烯基转移酶(PT, prenyltransferase),催化橄榄酸和焦磷酸香叶酯缩合生成大麻萜酚酸(CBGA, cannabigerolic acid)和副产物5-香叶基橄榄酸酯(5-geranyl olivetolate)。大麻萜酚酸作为大麻二酚和四氢大麻酚等大麻素的共同前体,被大麻二酚酸合酶(CBDAS,cannabidiolic acid synthase)和四氢大麻酸合酶(THCAS, tetrahydrocannabinolic acid synthase)分别氧化环化产生大麻二酚酸和四氢大麻酚酸,通过非酶脱羧过程转化为大麻二酚和四氢大麻酚。工业大麻花叶腺毛中提取药用成分大麻二酚进行新药研发成为工业大麻产业发展的新方向,预计2025年市场规模将达到202亿美元[
参考文献 12-13
12-13]。工业大麻是我国重要的经济作物,在我国的广西、云南、黑龙江以及西北等省(区)均有种植,其中广西以及我国西北等省区以籽用为主,云南以药用和籽用为主,黑龙江以纤维用为主[
参考文献 5
百度学术    
5]。由于近几年大麻素及其籽蛋白产品的市场规模飞速增长,市场对于优异工业大麻品种的需求越来越大。

相比于欧美等国工业大麻主栽品种,我国主栽品种大麻二酚含量有待提高[

参考文献 14
百度学术    
14]。目前工业大麻的主要育种手段有常规杂交育种、系统育种和诱变育种[
参考文献 15
百度学术    
15]。相较于杂交育种和系统育种周期长、效率低等特点,诱变育种具有明显缩短育种进程的特点。目前常用的诱变育种方法以物理诱变和化学诱变为主[
参考文献 16
百度学术    
16]。化学诱变的性状稳定且操作较容易,已被用于多种作物 [
参考文献 17
百度学术    
17]。甲基磺酸乙酯(EMS,ethyl methanesulfonate)作为常用的化学诱导试剂,在苦荞[
参考文献 18
百度学术    
18]、罗布麻[
参考文献 19
百度学术    
19]、水稻[
参考文献 20
百度学术    
20]、玉米[
参考文献 21
百度学术    
21]、小麦[
参考文献 22
百度学术    
22]、大豆[
参考文献 23
百度学术    
23]、高粱[
参考文献 24
百度学术    
24]等作物的种质创新中得到成功应用,培育出了矮化玉米、矮化水稻、高抗旱玉米等优良品种。

本研究通过EMS诱变中国农业科学院麻类研究所培育品种中大麻资4号(皖品鉴登记字第2009001),构建了一个工业大麻突变体群体并分析突变群体的表型变异特点。通过筛选大麻二酚含量变异突变体,进一步分析突变体中大麻素代谢途径中5个关键催化酶基因CBDAS、THCAS、CsPT4、CsOAC1和CsOLS1的DNA序列及表达水平[

参考文献 25-27
25-27],解析突变体中大麻素含量产生差异的原因,为大麻素合成途径调控机制的研究提供基础,也为高大麻二酚工业大麻品种的遗传改良提供新的思路。

1 材料与方法

1.1 试验材料

本研究选用中大麻资4号(皖品鉴登记字第2009001)为诱变材料,该材料来自中国农业科学院麻类研究所。此品种为雌雄异株品种,生育时期分为出苗期、现蕾期、开花期、种子成熟期;全生育期为152 d,花叶成熟期为136 d,平均株高3.14 m,花叶产量2556~2717 kg/hm2,大麻二酚含量4.84%,四氢大麻酚含量0.22%。甲基磺酸乙酯(EMS)为诱变剂。

1.2 试验方法

1.2.1 最佳EMS浓度确定

将EMS溶液加入磷酸缓冲液(浓度为1.2 g/mL)配置7个诱变剂浓度:0、0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%和1.2%(不含EMS的磷酸缓冲液为对照)。不同浓度梯度的EMS溶液中均放入健康饱满的中大麻资4号种子各150粒,并保持200 r/min震荡13 h。震荡结束后用Na2S2O3(0.2 mol/L)中和EMS溶液,并使用蒸馏水冲洗种子3次后于阴凉处晒干。于7 d、10 d和14 d分别计算种子萌发率(发芽数量占种子总量的百分比)。EMS处理常以植物种子半致死(LD50)浓度为宜[

参考文献 28
百度学术    
28],即保证EMS处理后50%左右植株能够正常出苗,根据LD50浓度确定EMS最佳处理浓度。

1.2.2 突变体群体构建与性状调查

本研究中的中大麻资4号的最佳EMS浓度为0.8%。挑选健康饱满种子2000粒进行0.8% EMS诱变处理13 h后,使用蒸馏水冲洗种子3次后于阴凉处晒干。于2021年5月20日在吉林省延边市犇福农场小区进行诱变后种子播种,选择平整小区4个,每个小区面积为80 m2,小区长20 m,宽4 m,每个小区播种500粒种子,行距0.80 m,株距0.20 m。出苗后统计黄化苗、叶色异常、株型异常植株;80~100 d观察突变体株系变异、花期变异、花型变异的植株;当代植株种子混收,获得M1种子。萌发率:田间实际出苗数量占种子总量的百分比;黄化率:黄化苗数量占田间实际出苗数量的百分比。同时设置3个对照小区种植未经EMS处理的中大麻资4号植株,种植面积和种植密度与突变体植株区域保持一致。

1.2.3 突变体植株扦插与扩繁保存

吉林省延边市犇福农场小区播种的诱变后种子出苗2个月后通过扦插方式对M1代所有植株在温室花盆中进行扩繁与保存,每个植株保证3~4个扦插苗成活。以M1代植株及其扩繁植株中均观察到相同的突变性状作为突变体的认定标准,从而去除环境因素对性状改变的干扰。经确认后的突变体植株种质均通过不断扦插方式保存。

1.2.4 突变体大麻素含量测定

中大麻资4号植株进入盛花期后,从对照小区中随机选取正常生长的15株中大麻资4号植株作为对照材料,并选取长势基本一致的突变体材料322株,取相同部位花头,参考Deng等[

参考文献 29
百度学术    
29]方法,采用高效液相色谱法进行大麻素大麻二酚含量测定,进样体积为 10 μL,流速1 mL/min,检测波长为 220 nm,流动相A 相为超纯水,流动相 B 相为乙腈,梯度洗脱条件为0~20 min,从中筛选出高大麻二酚和低大麻二酚含量株系。高大麻二酚含量株系为大麻二酚含量高于对照组大麻二酚含量20%的株系;低大麻二酚含量株系为大麻二酚含量低于对照组大麻二酚含量20%的株系。

1.2.5 基因克隆及突变位点检测

对吉林省延边市犇福农场小区生长的每株中大麻资4号突变体植株取新鲜大麻花序0.20 g,使用TIANGEN公司植物基因组DNA提取试剂盒(DP30)提取工业大麻总DNA。根据NCBI网站(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)大麻参考基因组(Cs10:GCA_900626175.2)得到CsPT4、CsOAC1、CsOLS1、CBDAS和THCAS的基因组序列(包括启动子区)信息,使用Snapgene软件设计相关基因引物(表1)。使用TIANGEN公司2×Taq PCR预混试剂Ⅱ(KT211-03)进行克隆,按试剂盒说明书建议条件进行PCR反应。使用TIANGEN公司的DNA 纯化回收试剂盒(DP214) 进行PCR胶回收,方法参照说明书,回收产物使用pGEM®-T Easy试剂盒连接T载体后由北京擎科生物科技有限公司测序。

表1 本研究所用引物序列

Table 1 Primer sequences mentioned in this study

引物名称

Primers

目的基因

Target gene

Genbank

登录号

Genbank ID

序列(5'-3')

Sequence(5'-3')

片段长度(bp)

Amplicon length

用途

Purpose

CsPT4-GDNA-PART1 CsPT4 LOC115713185 F: CTAACAAACCTATCTTGGGAGAATAT 3666

CsPT4基因组DNA

第1部分克隆

R: CAGGTCCAAGTTTGGGGTTAG
CsPT4-GDNA-PART2 CsPT4 LOC115713185 F: GATTCTGACTCTAACTTAGACATTAG 6643

CsPT4基因组DNA

第2部分克隆

R: AGACCCCAAGTTATATTAGCACTT
CsPT4-GDNA-PART3 CsPT4 LOC115713185 F: CACAATAGTTAAAGTGCTAATATAACTTG 7028

CsPT4基因组DNA

第3部分克隆

R: GGTCTTATATAAATACATATACAAAGTATTCAG
CsOAC1-GDNA CsOAC1 LOC115723438 F: AACGGAACCTTCTACCCGG 1408 CsOAC1基因组DNA克隆
R: TAGTCTACTTTCGTGGTGTGTAG
CsOLS1-GDNA CsOLS1 LOC115700696 F: GTATTTTTACATTAAAATAATGTAT 2620 CsOLS1基因组DNA克隆
R: ATATTTGATGGGAACACTACGC
CsCBDAS-GDNA CsCBDAS LOC115697762 F: TGGCTTGCTCTTAATTGTTTAGC 2635 CsCBDAS基因组DNA克隆
R: TTAATGACGATGCCGTGG
CsTHCAS-GDNA CsTHCAS LOC115697901 F: GGAGAGCCAACTTTCACTATAA 2638 CsTHCAS基因组DNA克隆
R: TTTTAAAGATAATTAATGATGATGCGGTGG
TUB Tubulinα-1 JP479709 F: CTCGGCTGAGAAAGCATACC 102 持家基因
R: CCATGCCTAGGGTCACACTT
CsPT4-EXP CsPT4 LOC115713185 F: CAGTGTACCAAAGTTCATAC 153 CsPT4表达水平
R: CACAATCAAGGTCCATTAGG
CsOAC1-EXP CsOAC1 LOC115723438 F: CTGAAATCATCCCTTTTACTGCA 110 CsOAC1表达水平
R: CAGCCATGAAAGATGTATACTG
CsOLS1-EXP CsOLS1 LOC115700696 F: GTAGTCCTGAATAGTCTCCACACTCT 127 CsOLS1表达水平
R: GTGAACACATGACTCAACTCAAAG
CsCBDAS-EXP CsCBDAS LOC115697762 F: ATCTCGTGCTCCACCAATC 188 CsCBDAS表达水平
R: GATCCGCTGGGCAGAACGGT
CsTHCAS-EXP CsTHCAS LOC115697901 F: CAGCAATTCCATTCCCTCAT 63 CsTHCAS表达水平
R: TTTCAGAATCAGCAATTC

1.2.6 荧光定量PCR检测基因表达

取吉林省延边市犇福农场小区生长的每株中大麻资4号突变体植株花序0.15 g,使用TIANGEN公司植物总RNA提取试剂盒提取RNA,并用TIANGEN公司FastKingcDNA第一链合成试剂盒去除基因组DNA污染影响后,合成cDNA第一链,每个样品设置4个生物学重复。根据大麻二酚酸(CBDA,cannabidiolic acid)合成催化酶基因(CBDAS)、四氢大麻酚酸(THCA,tetrahydrocannabinolic acid)合成催化酶基因(THCAS)、香叶基焦磷酸二羟基戊基苯甲酸香叶基转移酶基因(CsPT4)、橄榄酸环化酶基因(CsOAC1)和橄榄醇合成酶基因(CsOLS1)的序列特点,使用PerlPrimer (sourceforge.net) 设计引物CsCBDAS-EXP、CsTHCA-EXP、CsPT4-EXP、CsOAC1- EXP和CsOLS1-EXP引物(表1),以大麻花序cDNA第一链为模板进行qRT-PCR分析。

使用TIANGEN公司SYBRMixture试剂盒进行qRT-PCR试验,PCR反应体系按照试剂盒说明书进行配制,扩增程序为:95℃预变性10 min;95℃变性15s,60℃退火1min,35个循环。以内参基因Tubulinα-1(表1)的Ct值作为对照,采用2-△△Ct法计算基因相对表达量[

参考文献 30
百度学术    
30]。

1.3 数据分析

本研究使用SPSS统计软件包(version16.0, SPSS, 2007)对试验数据进行统计分析,数据图表使用Microsoft Excel软件完成。

2 结果与分析

2.1 突变剂量选择

在对EMS浓度梯度试验中,对不同浓度溶液处理下中大麻资4号萌发率进行统计分析,结果表明,播种后14 d,EMS明显抑制工业大麻种子萌发。EMS浓度为0时,播种后14 d中大麻资4号萌发率可达95%。当EMS浓度从0.2%提高到0.6%时,播种后14 d中大麻资4号的萌发率从87%降低至62%。当EMS浓度从0.8%提高到1.0%时,播种后14 d中大麻资4号种子的萌发率明显下降,从41%降低至25%。在1.2% EMS处理中,播种后14 d中大麻资4号种子萌发率仅为0.05%(图1)。EMS浓度为0.8%时,种子萌发率为41%,最接近半致死率,因此采用0.8% EMS为诱变浓度进行中大麻资4号突变体群体构建。

图1  不同浓度 EMS 处理中大麻资4号种子萌发率统计

Fig. 1  Seed germination rates of ZHONGDAMAZI 4 treated by EMS with different concentrations

2.2 突变表型观察

经EMS诱变后,中大麻资4号M1共成苗644株,萌发率为32.2%。在不同生育阶段开展田间表型调查及统计发现多种表型发生变异(表2)。除27株黄化苗植株外,还获得了多个性状的突变体植株共计63株,包括叶色突变为紫色植株、雌花发育出现退化植株、二级分支花头生物量增加植株和不同程度矮化(株高降低50 cm以上)突变植株。发现工业大麻叶色突变为紫色植株15株,占成苗植株的2.33%(图2A、2B)。雌花发育退化植株14株,占成苗植株的2.17%(图2C)。二级分枝花头生物量增加的植株共10株,占成苗植株的1.55%。呈现不同程度矮化植株共有24株,其中19株比对照植株株高矮化50~100 cm之间,占突变株数的2.95%(图2D),5株比对照植株株高降低超过100 cm,占突变株数的0.78%(图2E)。黄化苗是诱变育种的一个常见表型特征,突变植株中共出现黄化苗27株,黄化率为4.19%(图2F)。

表2  中大麻资4号突变体表型统计
Table 2  The phenotypic analysis of ZHONGDAMAZI 4 mutations

变异类型

Variation types

表型

Phenotype

突变株数

Mutant plants

突变率(%)

Mutant ratio

叶色 Leaf color 黄化苗 27 4.19
突变为紫色 15 2.33
花序 Inflorescence 雌花发育退化 14 2.17
二级分枝花头生物量增加 10 1.55
株高 Height 植株矮化50~100 cm 19 2.95
植株矮化100 cm以上 5 0.78
总计 Total 90 13.98

图2  中大麻资4号突变体田间表型

Fig. 2  The field phenotype of ZHONGDAMAZI 4 mutant

A、B :叶色突变为紫色;C :雌花发育退化(左侧为正常植株,右侧为雌花发育退化植株);D :矮化突变(左侧为矮化植株,右侧为正常植株);E :矮化突变;F :黄化苗(左侧为黄化苗,右侧为正常植株)

A,B: Leaf color changed to purple mutant type; C: Pistillate flower degeneration type(the normal height plant showed in left, the pistillate flower degeneration plant showed in right); D: Dwarf mutant type(the dwarf mutant showed in left, the normal height plant showed in right); E: Dwarf mutant type; F: Etiolated seedling type(the etiolated seedling plant showed in left, the normal height plant showed in right)

2.3 突变体大麻素含量测定

中大麻资4号植株进入盛花期后,参考Deng等[

参考文献 29
百度学术    
29]方法采用高效液相色谱法对突变体材料和对照材料进行大麻素含量测定,从中筛选出高大麻二酚及低大麻二酚含量株系。结果显示,与对照相比,突变体花头中大麻二酚含量有明显的变化。对照平均大麻二酚含量在4.45%~5.22%之间,平均含量为4.84%。筛选到高大麻二酚含量材料为EMS-12、EMS-79、EMS-153;低大麻二酚含量株系为EMS-58、EMS-211(图3);其他为中等大麻二酚含量材料,其大麻二酚含量在3.87%~5.81%之间。

图3  突变体大麻素大麻二酚含量测定

Fig. 3  The detection of CDB content in mutant lines

EMS-12、EMS-79、EMS-153、EMS-58和EMS-211为不同的突变体材料

EMS-12,EMS-79,EMS-153,EMS-58 and EMS-211 are different mutation lines;CBD:Cannabinoid

2.4 突变体大麻素代谢途径关键催化酶基因克隆及测序分析

大麻素合成代谢途径涉及CsOLS1、CsOAC1、CsPT4、CBDAS和THCAS 5个基因,这5个基因在催化大麻素合成过程中起关键作用。本研究对中大麻资4号大麻二酚含量突变体株系(EMS-12、EMS-79、EMS-153、EMS-58和EMS-211)和对照进行取样并通过设计特异性引物扩增以上5个基因的编码区和启动子区DNA片段并测序。DNA测序结果显示:大麻二酚含量突变体株系与对照植株相比在5个关键催化酶基因的编码区内均未发现碱基突变,其启动子区范围内DNA序列也未发生突变。因此大麻二酚含量突变体中大麻二酚含量显著变异不是由催化酶基因自身序列突变导致。

2.5 突变体大麻素代谢途径关键催化酶基因表达分析

大麻二酚含量突变体株系和对照中5个催化酶的基因表达水平结果显示,与对照相比,大麻二酚含量突变体株系中不同催化酶表达水平发生明显改变,高大麻二酚含量株系EMS-12中CsPT4基因表达水平是对照的1.82倍,高大麻二酚含量株系EMS-79中CBDAS基因表达水平是对照的1.60倍,高大麻二酚含量株系EMS-153中CsOLS1基因表达水平是对照的1.51倍;低大麻二酚含量株系EMS-58的CsPT4基因表达水平相比对照下降61.76%,低大麻二酚含量株系EMS-211在CsOAC1基因表达上相比对照下降36.26%(表3)。显著性分析结果也表明以上基因表达量在突变株系中与对照中均达到显著差异水平。由于大麻二酚含量突变体株系中以上5个关键催化基因及其启动子区序列本身并未发生突变,突变可能影响了相关催化酶调控基因的功能,进而对大麻素合成代谢相关催化酶基因表达水平产生影响,最终表现为突变体花头中大麻二酚含量显著上升或下降。

表3  开花期突变体大麻素合成相关途径基因表达分析
Table 3  Expression of genes involved in cannabinoid synthesis in mutants during flowering stage

植株

Plants

CBDASTHCASCsPT4CsOAC1CsOLS1
对照 CK 7.8b 2.5a 3.4b 9.1a 6.3b
EMS-12 7.5b 2.3a 6.2a 8.6a 5.8b
EMS-79 12.5a 2.7a 3.1b 8.8a 6.7b
EMS-153 7.6b 2.1a 2.8b 9.3a 9.5a
EMS-58 7.3b 2.5a 1.3c 9.0a 6.5b
EMS-211 8.2b 2.2a 3.7b 5.8c 6.1b

小写字母表示突变体与对照组相比在P<0.05水平差异显著

The lower-case letters indicate a significant difference between the mutant and the control group at the P<0.05 level

3 讨论

目前全球工业大麻种植、加工和利用的分布总体呈现了欧盟、北美、中国三大主产区的格局,以上三大产区种植面积占全球一半以上,仅2019年大麻二酚产品市场年交易额就达35亿美元[

参考文献 31
百度学术    
31]。目前,国内外许多研究机构针对该作物生长特点开展分子育种方面的研究,希望借助基因工程及转基因技术定向培育满足生产需要的工业大麻品种,由于技术尚不成熟进展缓慢[
参考文献 32-33
32-33]。通过EMS诱变剂创制突变体群体,创制具有优异表型性状的突变体株系已成为种质创新的重要途径[
参考文献 18
百度学术    
18]。

本研究在工业大麻中构建了突变体群体,并对其进行表型分析。当EMS溶液浓度上升、诱变时间延长时,植物组织DNA受损程度显著加剧,导致突变体数量增多,然而,过高的损伤可能导致植物无法存活。相反,诱变剂量和诱变时间不足会降低突变发生频率并降低突变体筛选效率。不同种类作物对EMS耐受性存在较大差异,在利用EMS构建植物突变体群体时首先应摸索适合的诱变剂量和诱变时间,常采用半致死率为标准,即诱变后能够存活一半植株的EMS剂量和时间组合。诱变时间和诱变剂量对突变频率均能产生影响,本研究参考罗布麻等麻类作物的相关报道[

参考文献 19
百度学术    
19],将诱变时间设定为13 h,只通过EMS剂量调整达到预期目的。本研究从0.2%到1.2%共设置6个EMS浓度梯度,发现当浓度为0.8%时,种子萌发率为41%,最接近半致死率,因此采用0.8% EMS为诱变浓度进行中大麻资4号突变体群体构建。

目前EMS诱变筛选突变体大多应用于一年生自交繁殖作物,此类作物大多通过自交在M2代或M3代获得纯合突变材料用于后续研究应用。在苦荞品种黑丰1号EMS突变体库创制中,研究人员采取种子混收的方式连续种植两代,到M3代进行突变体性状调查[

参考文献 18
百度学术    
18]。在小麦品种济麦22的EMS突变体库创制中,M1代植株采用单株收获的方式获得1213个株系,并在当年秋天采取每个株系种植40个单株的方式获得济麦22的M2代突变群体并开展性状调查[
参考文献 22
百度学术    
22]。工业大麻属于雌雄异株植物,其异花授粉特性决定同一品种子代个体间存在遗传差异[
参考文献 34
百度学术    
34]。突变出现后在M2代及以后子代获得纯合突变材料难度较大。通过扦插繁殖方式保存优异工业大麻资源及扩繁,其子代遗传背景与母本相同,可保持母本植株全部优异性状[
参考文献 35
百度学术    
35]。在工业大麻突变群体构建中,对M1代进行扦插扩繁并在筛选获得突变体后保存优异突变,是加快工业大麻突变体表型鉴定、提高突变体利用效率的必然选择。本研究在工业大麻M1代中进行突变体筛选,获得了多个性状的突变体植株共计90株,包括叶色突变为紫色15株、雌花发育退化14株、二级分支花头生物量增加10株、不同程度植株矮化(株高降低50 cm以上)突变24株,黄化苗27株。由于工业大麻中调控相关性状的基因尚未见报道,以上突变体植株为相关性状调控机制研究及基因资源挖掘提供了实验材料。

由于大麻素成分大麻二酚在抗抑郁、抗炎和缓解疼痛等方面具有重要的药用价值和临床应用前景[

参考文献 6-8
6-8],使用工业大麻花叶腺毛中提取药用成分大麻二酚进行新药研发成为工业大麻产业发展的新方向[
参考文献 12-13
12-13]。大麻素的生物合成过程非常复杂,涉及乙酸途径、甲基赤藓醇磷酸(MEP,methylerythritol phosphate)途径、焦磷酸香叶酯途径和以上3条途径产物为反应底物的大麻素(Cannabinoid)途径[
参考文献 36
百度学术    
36]。己酸途径合成前体物质乙酰辅酶A,甲基赤藓醇磷酸和焦磷酸香叶酯途径合成前体物质焦磷酸香叶酯,两者通过聚酮合酶(PKS,polyketide synthase )和异戊二烯基转移酶的作用得到多种大麻素的中心前体大麻萜酚酸,再由大麻二酚酸合成酶和四氢大麻酚酸合成酶分别催化生成大麻二酚酸和四氢大麻酚酸,经过脱羧最终生成大麻二酚和四氢大麻酚,大麻素大麻二酚的生物合成主要受5个关键催化酶(CsPT4、CsOAC1、CsOLS1、CBDAS和THCAS)影响[
参考文献 37
百度学术    
37]。

工业大麻花叶中含有120余种大麻素,其中与大麻二酚结构相似的就有8种[

参考文献 38
百度学术    
38]。高效液相色谱法灵敏度高, 能准确区分大麻二酚及其相似化合物,且检测后不会对大麻素结构产生影响, 已广泛应用于大麻素分析中[
参考文献 39
百度学术    
39]。本研究通过高效液相色谱法技术对突变群体花头中大麻二酚含量进行测定并筛选到5个大麻二酚含量变异株系。其中突变株EMS-12、EMS-79和EMS-153的大麻二酚含量较对照分别提高38.64%、47.11%和23.35%;EMS-58和EMS-211的大麻二酚含量较对照分别降低51.03%和31.20%。大麻素作为植物次生代谢产物,其含量高低受到大麻个体间遗传差异及田间微环境影响[
参考文献 40
百度学术    
40]。本研究在对随机采样的45株对照植株进行大麻素检测分析后发现,中大麻资4号大麻素含量的个体间差异未超过8%。本研究将大麻二酚含量变异株系的标准定义为大麻二酚含量高于或低于对照大麻二酚平均含量20%,该标准能够有效区分大麻二酚含量变异株系与未变异株系。植物大麻素生物合成途径分为 3 个催化步骤:聚酮合成、异戊烯化和氧化环化[
参考文献 41
百度学术    
41]。在以上催化步骤中有5个关键限速酶:橄榄醇合成酶、橄榄酸环化酶、异戊烯基转移酶、大麻二酚酸合酶和四氢大麻酚酸合酶[
参考文献 42
百度学术    
42]。任何一个酶的蛋白功能变化都会对最终大麻素含量产生显著影响。本研究首先对大麻二酚含量突变体中5个关键催化酶基因的编码区及启动子区DNA序列进行克隆及测序,均未发现序列突变。排除DNA序列变异的可能性后,进一步对以上催化酶在盛花期的表达水平进行探究,发现大麻二酚含量突变体中以上关键酶表达与对照存在显著差异:与对照相比,在大麻二酚含量升高的突变体EMS-12、EMS-79和EMS-153中分别检测到CsPT4、CBDAS和CsOLS1表达水平显著上升;在大麻二酚含量降低的突变体EMS-58和EMS-211中分别检测到CsPT4和CsOAC1表达水平显著下降。以上基因编码大麻二酚合成途径中不同阶段前体物质的催化酶,其表达水平直接影响最终大麻二酚含量高低。由于在大麻二酚含量突变体中均未发现编码关键催化酶基因(包括启动子区)存在序列变异,但是在大麻二酚含量突变体中检测到以上5个基因表达水平存在显著升高或降低,且变化趋势与大麻素检测结果一致。由此推断EMS导致了突变体中某些代谢调控基因突变进而影响大麻二酚合成代谢途径关键催化酶的表达,最终表现为突变体花头中大麻二酚含量显著变化。尽管有研究显示多个基因家族或与大麻素合成代谢有关联,但其调控大麻二酚合成代谢的分子机制尚不清楚,且适用于工业大麻的遗传转化体系的建立及应用尚不成熟,因此无法开展有针对性的分子育种工作[
参考文献 43-44
43-44]。解析大麻二酚合成代谢途径的调控机制及相关调控基因的克隆是目前工业大麻分子育种领域急需解决的问题,也是培育优质高产工业大麻品种的理论基础。本研究构建的中大麻资4号突变体群体,丰富了工业大麻种质资源。通过扦插扩繁保存的大麻二酚含量突变体材料是克隆大麻二酚合成调控相关基因及解析其分子作用机制的良好研究对象。关于EMS诱变剂使用浓度的摸索也为更多工业大麻品种突变体群体的创制提供了参考。

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